抽象的
背景
肉桂醇脱氢酶(Cinnamyl alcohol dehydrogenase, CAD)是木质素单体合成过程中重要的最后一步酶。我们之前的工作发现干旱诱导了cmcad.基因并促进甜瓜茎中木质素生物合成。
结果
本文研究了脱落酸(ABA)、过氧化氢(H2O.2)和茉莉酸(JA)cmcads.在干旱压力下。结果发现干旱诱发的ABA,H2O.2和Meja有效地阻止了用氟酮(流感,ABA抑制剂),咪唑(IMI,H2O.2清道夫)和布洛芬(IBU,JA抑制剂)。阿巴和H.2O.2参与积极的规定CMCAD1.那2那3., 和5.而JA则参与了正向调控CMCAD2.那3., 和5..根据木质素生物合成基因的表达谱,ABA,H2O.2和Meja都表现出积极的规定CmPAL2-like那CmPOD1-like那cmpod2样和CmLAC4-like.此外,也与ABA观察过肯定规定cmpal1样那CMC4H.和CMCOMT.与H2O.2来cmpal1样那CMC4H.那CMCCR.和CMLAC17样,和ja到CMCCR.那CMCOMT.那CmLAC11-like和CMLAC17样.如预期的那样,信号分子正调控干旱胁迫下CAD活性和木质素生物合成。启动子:GUS检测不仅进一步证实了信号分子的调控作用CmCAD1 ~ 3,也揭示了其重要作用CMCAD3.由于最强的染色而在木质素合成中CmCAD3发起人::格斯.
结论
cmcads.但CMCAD4.正调控ABA, H2O.2和JA在干旱胁迫下参与木质素的合成。
背景
木质素是植物中的第二种富含物质[1除了支持的基础功能外,还在SAP运输和水障中起重要作用[2].在木质素单体合成途径中,肉桂醇脱氢酶(CAD)是一种重要的酶,其在最后一步中起到负责肉桂醛和褐胶醇之间的转化的重要酶。木质素合成不仅符合常规增长,而且可以通过生物和非生物胁迫来调节。随着一个经常发生的非生物应激,干旱对植物生长产生负面影响,但促进了褐化过程。有些研究表明,诱导胶合酶(肉桂酰CoA还原酶(CCR),CAD,种类的过氧化物酶),在干旱胁迫下在芽中促进了木质素合成[3.那4.那5.那6.].而在根系中,遭受干旱胁迫时,木质素的生物合成开始受到抑制,后期受到诱导[7.那8.那9.].对紫地化的阳性促进干旱可能会在水运输方面进行植物耐旱性[10水分损失[11].
干旱胁迫诱导的信号分子如脱落酸(ABA)、过氧化氢(H2O.2)、茉莉酸(JA)、水杨酸(SA)等。既往研究报道JA可诱导CAD.基因表达 [12],并与活性氧(ROS)一起促进木质素沉积[13那14].H2O.2光不仅可以控制笋的木质化[15],但也有根无光[16].虽然ABA的监管仍然存在争议,Mohr和Cahill(2007)[17[报道,ABA抑制木质素综合,征询拟南芥叶片,但研究还发现,ABA增加了木质素生物合成基因的表达(苯丙氨酸氨(朋友),肉桂酸4-羟化酶(C4H),4-香豆素-CoA连接酶(4CL5.),CAD.那CCR,阿魏酸5-羟化酶(F5H1))和番茄酶(PAL,过氧化物酶(POD))的活性,从而促进了木质素的积累[18那19那20.].此外,在ABA,JA,SA和成熟组织中的胃果和衰老组织之间也观察到阳性相关性[21那22].
作为木质素单体合成途径中的重要酶,CAD酶的活性和表达水平CAD.基因被干旱和信号分子促进,导致木质素沉积[5.那16那23].CAD.基因通常作为一个基因家族出现在不同的物种中,每个成员的功能可能不同或不同[24那25].我们的团队发现了五个cmcad.甜瓜基因组数据库中的基因(http://melonomics.cragenomica.es/)[26发现干旱胁迫可以显著上调甜瓜幼苗的产量[27].但是,仍然不清楚哪种信号分子负责调节cmcads.在干旱压力下。
本研究探讨了ABA、H2O.2和ja到五cmcad.基因以及一些木质素生物合成基因,通过使用它们相应的抑制剂或清除剂来沉积木质素沉积。然后进行启动子:: GUS测定以研究信号分子的规定CMCAD1.那2, 和3.,根据系统发育分析选择哪些成员[26]和干旱胁迫下的表达谱[27]以及甜瓜幼苗中的表达模式(未发布数据)。结果显示了ABA,H的重要作用2O.2和JA在调节CmCAD1 ~ 3那5.和木质素生物合成基因,从而调控干旱胁迫下木质素的生物合成。
结果
干旱诱发ABA,H2O.2MeJA可被相应的抑制剂或清除剂抑制
阿巴和H.2O.2经常被报告为在干旱胁迫下调节下游基因表达和代谢的重要信号分子[6.那28].然而,JA在干旱胁迫下的作用仍有争议[29].探讨ABA、H2O.2干旱胁迫下甜瓜茎中ABA、H2O.2确定并发现并发现信号分子全部通过PEG处理诱导(图。1A-C)。阿巴和H.2O.2在2小时(1.6倍)和3小时(2.26倍)时,达到干旱快速,达到峰值,而在PEG处理后JA达到7小时(1.54倍)的峰值。虽然在达到峰值后观察到降低,但信号分子的含量仍然比对照的含量保持更高。
氟立酮(Flu)、咪唑(Imi)和布洛芬(Ibu)被用作抑制剂或清除剂,用于研究ABA、H2O.2和植物中的Ja [30.那31].在这里,我们评估了流感,IMI和IBU到ABA的抑制效率2O.2分别在甜瓜茎下分别在干旱胁迫下。如图所示。1D.-F那T.he signal molecules slightly decreased when treated with Flu, Imi or Ibu alone, showing 9.5, 7.5 and 11% decreases compared to those in control, respectively, but were significantly restricted from increasing in PEG-treated melon stems pretreated with Flu, Imi and Ibu, showing 26.4, 36.1 and 22.7% decreases compared to those in PEG-treated samples, respectively. Thus, they can also be used as effective inhibitor or scavenger in melon seedlings for further study.
cmcads.ABA、H2O.2和Meja在干旱下
干旱诱导的关系cmcads.[27然后对信号分子进行研究。如图所示。2,表达概况CmCAD1 ~ 5在PEG处理下,分别增加了4.2、7.3、10.3、3.2、5.6倍。ABA处理显著上调CMCAD1.(2.8折),2(4.4折),3.(5.2折),和5.(2.8倍),而Flu预处理可显著抑制peg处理甜瓜幼苗中上述因子的上调(分别为2.2、4.8、4.2、3.4倍)。H2O.2治疗也显着上调了表达式CMCAD1.(2.3折),2(5.5倍),3.(4.3折),5.(4.4折),IMI预处理严重抑制了它们在PEG处理的甜瓜幼苗(2.5,2.6,5,2倍)中的上述规定。Meja治疗显着上调了表达式CMCAD2.(6.8折),3.(7.6倍),和5.(4.6倍),IBU预处理在PEG处理的甜瓜幼苗(2.8,4.2,1.9倍)中强烈抑制了它们的上述规定。值得注意的是,Meja表现出更强大的法规CMCAD2.和3.比aba和h2O.2做过。CMCAD4.用信号分子略微调节。单独用每种抑制剂或清除剂治疗没有或没什么影响cmcads.表达。
木质素生物合成基因由ABA,H多样化2O.2和Meja在干旱下
随后,我们还研究了木质素单体合成途径中一些木质素生物合成基因的表达谱,如图所示。3..CMC4H.那cm4cl.那CMCCR.和咖啡酸O.- 甲基转移酶(CMCOMT.),根据Jing et al. (2018) [32].cmpal1.-像那cmpal2.-像那CmPOD1-像那CmPOD2-像漆酶(CmLAC4-像那CMLAC11.-像和CMLAC17.-像)基因对拟南芥中木质素合成中鉴定的相应基因进行高度同源[33那34那35].
木质素生物合成基因在干旱胁迫下的表达中均高度调节。在基因中,cmpal1样那CmPAL2-like那CMC4H.那CMCOMT.那CmPOD1-like那cmpod2样和CmLAC4-like在PEG+Flu处理下,ABA信号被抑制,表明ABA信号参与了这些基因的调控。同样的,cmpal1样那CmPAL2-like那CMC4H.那CMCCR.那CmPOD1-like那cmpod2样那CmLAC4-like和CMLAC17样由h上调2O.2治疗和限制在PEG + IMI处理下的诱导,表明H的正规调节2O.2这些基因。木质素生物合成基因除了cmpal1样那CMC4H.和cm4cl.由Meja治疗诱导并被PEG + IBU治疗抑制,暗示JA信号传导涉及这些基因的调节。cm4cl.在这里学习仅被H略微调节2O.2.
CAD活动由ABA,H积极调控2O.2和Meja在干旱下
由于ABA, H2O.2和Meja在规范中发挥积极作用cmcads.在干旱胁迫下,有必要研究信号分子对CAD活性的影响。在各种治疗中,CAD活性在PEG处理下积极诱导,并且不受每个抑制剂或清除剂治疗的影响。信号分子处理促进CAD活性在甜瓜茎中增加,抑制剂或清除剂预处理抑制CAD活性在PEG处理的甜瓜茎中增加(图。4.).在信号分子中,ABA诱导CAD活性至显着水平(增加6.4-15.2%)(图。4.a),Meja促进CAD活动增加约4.9-17.9%(图。4.c),而h2O.2表现出轻微的CAD活性,在治疗后3天才达到显着水平(7%)(图。4.b).抑制剂或清除剂预处理均能强烈抑制peg处理甜瓜茎中CAD活性的上调。这些结果提示信号分子可能参与了PEG处理对CAD活性的上调。
木质素生物合成受ABA、H2O.2和Meja在干旱下
此外,进行木质素含量和组织化学染色的测定。结果如图1所示。5.PEG处理可显著促进木质素的合成,抑制剂或清除剂预处理可抑制木质素的合成。虽然没有达到显著水平,但信号分子处理对木质素的生物合成和沉积有轻微的促进作用。5.a,c,e)。用甘油蛋白-HCl的组织化学染色是常用于木质素观察的方法。与木质素含量检测一致,血管束中的木质组织在PEG处理下表现出最强的染色,在治疗中的抑制剂或清除剂的治疗中的适度染色,以及在治疗抑制剂或清除剂的对照染色(图。5.B,D,F)。这些结果表明,在干旱胁迫下,信号分子在木质素生物合成中发挥阳性作用。
启动子CMCAD1.那2, 和3.Aba,H是积极的诱导2O.2和惩罚
进一步研究响应cmcads.对三个信号分子,构建启动子::GUS载体cmcad1 pro :: gus那cmcad2 pro :: gus和cmcad3 pro :: gus在用ABA(100μm),H处理的烟草叶中进行GUS测定2O.2(10 mm)或Meja(100μm)。如图。6.揭示的阳性对照显示出由35s启动子驱动的最强的GUS染色,阴性对照表现出没有启动子的GUS染色。掌握之中,CAD1 PRO :: GUSGUS染色最轻微,cad 2职业::格斯谦虚,和CAD3 Pro :: GUS在甜瓜幼苗中表达最强,与表达模式一致。在信号分子处理下,cmcad1 pro :: gus由Meja略微引起,但是由ABA和H强烈诱导2O.2.尽管cmcad2 pro :: gus和cmcad3 pro :: gus表现出类似的染色模式,它们均略微由ABA诱导,并强烈地由H诱导2O.2和惩罚。Gus活性测定,图。6.B,与组织化学染色的结果相似。Gus活动驱动CMCAD1.启动子响应ABA,H增加9.7,15.9和4.6倍2O.2分别和惩罚。Gus活动驱动CMCAD2.启动子观察到1.5,1.9和2.2倍,响应ABA,H增加2O.2分别和惩罚。GUS活性分别增加1.2、1.6和1.7倍CMCAD3.启动子回应ABA,H2O.2分别和惩罚。这些结果表明,信号分子在调节方面发挥着重要作用CMCAD1.那2, 和3..
讨论
金等人。(2014)[26分析了这五个人的推动者cmcad.基因,并发现了负责ABA, H2O.2,Ja,强调等在植物中,aba,h2O.2JA是非常重要的信号分子,负责正常或胁迫条件下植物的生长调控[36那37那38].干旱是一种常见的非生物胁迫,通常诱导ABA、H2O.2和JA的高度增长[6.那39],然而,这些信号分子在不同物种中调节木质化的方式不同[14那17那20.那40].因此,有必要揭示这些信号分子的调节模式cmcad.干旱胁迫下甜瓜茎的木质素化及其基因的研究。
首先,我们确认了ABA,H2O.2和JA均能被干旱胁迫显著诱导,并在PEG处理后分别达到峰值,然后通过抑制剂或清除剂预处理有效地限制其达到每个峰值,表明其对下游的信号传导可以有效地减弱。而单独使用抑制剂或清清剂对信号分子及其后指标影响不大,这与Hu et al.(2013)、Kojo et al.(2006)、Shan and Liang(2010)等人观察到的结果相似[30.那41那42].当单独处理时,抑制剂或清除剂对信号分子的影响很小,但在PEG+抑制剂或清除剂处理下,信号分子的增加受到强烈抑制。这可以解释为它们对已存在的信号分子不做任何作用,而强烈抑制PEG处理诱导的信号分子的合成和积累。
抑制剂或清除剂的应用表明,ABA和H2O.2表现出类似的正向规则CMCAD1.那2那3., 和5..虽然,JA显示了更直接的法规CMCAD2.和3.,以及CMCAD5.,并表现出轻微的规定CMCAD1..CMCAD4.受到信号分子的轻微影响。这与以前一致cmcads.启动子分析[26].在1.5 kb启动子序列中cmcads.,启动子CMCAD1.那2, 和5.含有富含TC的重复(涉及防御和应力响应性的CIS作用元件),其可能会驱使基因对H响应2O.2.启动子CMCAD1.那2那3., 和5.包含ABRE元素(参与脱落酸反应的顺式作用元素),我们证明了这些cmcads.可以由ABA监管。CMCAD3.启动子包含TGACG-motif和CCAAT-boxCMCAD5.启动子含有CGTCA-MOTIF,所有这三个要素都作为CIS作用的调控元素参与MEJA反应性,在本研究中也证实。此外,还发现了一些其他压力和信号响应元件cmcad.启动子([26),表1)可能是在用抑制剂或清除剂预处理的沉默处理的甜瓜幼苗中观察到某些增加的原因。信号分子的正调节模式cmcads.与以前的报告一致CAD.基因可由几种信号分子调控[19那43和不同的CAD.家庭成员对信号分子和压力的反应可能不同,这是由于每个成员的功能不同[24那44].木质素生物合成基因的表达分析进一步证实了ABA,H的阳性规定2O.2干旱胁迫下的JA至Lignin生物合成。在一起,这些结果再次表明干旱介导基因表达,这取决于各种信号分子[8.那9.那45].
通过干旱应激和信号分子和PEG +抑制剂或+清除剂治疗略微诱导CAD活性和木质素含量。通过信号分子的外源性施加的CAD活性和木质素含量的轻微诱导可能是由于吸收效率以及外源施加信号分子的时间的效应。虽然PEG +抑制剂或+清除剂处理下的CAD活性和木质素含量的某些增加可能是由于抑制剂和清除剂的抑制效率,或者存在旁路信号通路。这些表明信号分子和CAD活性之间的正相关,导致木质素积累,这与先前的报告一致[6.].在信号分子中,ABA和H2O.2显示了类似的规定cmcad.基因,但ABA和JA表现出与CAD活性和木质素沉积类似的规定。但是,Mohr和Cahill(2007)[17[介绍了ABA和木质素之间的负相关,这可能是因为JA和SA更可能在生物应激下对木质素生物合成负责[46那47].在ABA和JA之间的生物应激之间观察到对抗和合作[48那49],ABA和JA相互作用之间的机制被认为是依赖和独立的方式[38].
JA也是一个重要的干旱响应信号[42那50]及调节木质素生物合成的功能[21那51].我们的结果证明了JA功能在促进干旱的甜瓜茎中促进木质素生物合成,在拟南芥中类似地观察到[40].关于H的研究2O.2也报道了对木质素化的正调控2O.2含量与较高的木质素沉积相对应[52]并减少h2O.2含量与较低的木质素沉积相关[16].始终如一地,我们的研究也观察到H的积极规定2O.2来cmcad.外源H基因的表达量、CAD活性和木质素化程度均较低,这可能与外源H基因的使用寿命较短有关2O.2.
早些时候,金等人。(2014)[26]分析并发现应激和信号反应元件的启动子cmcad.基因,后来,刘等人。(2018)[27]透露干旱可以诱导cmcads.表达和促进木质素沉积。作为本研究中揭示的信号分子和抑制剂或清除剂治疗,cmcads.正调控ABA, H2O.2和贾。为了进一步证明调节模式,通过用启动子取代35s启动子来构建启动子:: GUS构建体CMCAD1.那2, 和3.,分别在pCAMBIA1381Z载体中。这三个基因是根据它们对干旱胁迫的积极反应而选择的[27[系统发育分析[26]及其在木质素合成中的主要作用[53].信号分子处理后的烟草叶片GUS染色结果显示,信号分子的调控模式与三种信号分子相似cmcad.基因表达分析显示一致cmcad.基因可以由与Kim等人类似的应激诱导的信号分子调节。(2010)[43]报道。然而,cmcad1 pro :: gus显示不含信号分子处理的最轻的GUS染色和活性,而且cmcad3 pro :: gus在所有条件下表现出最强的染色和活动cmcad2 pro :: gus适度的。这些GUS分析进一步证实了ABA,H的规定2O.2和JA到CMCAD1.那2, 和3.一方面证明了CMCAD3.可能是东方甜瓜幼苗的主要吊血成员。
结论
3个信号分子对干旱胁迫反应强烈,ABA和H2O.2以快速的方式。在信号分子中,ABA和H2O.2显示出类似的正调节模式CMCAD1.那2那3., 和5., JA正调控CMCAD2.那3., 和5..此外,这些信号分子还表现出对大多数木质素生物合成基因的阳性规定。通过信号分子调节CAD活性和木质素含量,显示出褐化与干旱胁迫下的信号分子之间的正相关性。此后启动子:: GUS测定提供了进一步的示范,即信号分子在调节方面函数CMCAD1.那2, 和3..
方法
植物材料及处理
东方甜瓜(Cucumis Melo.var。makuwa以黑龙江省齐齐哈尔市蔬菜研究所购品种“彩红7号”为试验材料,进行木质化相关分析。烟草benthamiana)保留在我们的实验室(沉阳农业大学教育部和辽宁省保护部的重点实验室,沉阳,中国。)用于推动者分析。种子在播种前灭菌。使用Yamasaki甜瓜营养溶液(半强度)培养甜瓜幼苗[54],每2天更新一次,盆栽(土壤:泥炭:堆肥= 1:1:1),两株幼苗均在本实验室生长室(25±2℃,14 h/10 h光照/暗循环)中培养。
用四个完全消耗叶片的甜瓜幼苗用于治疗。对于干旱处理,将PEG-6000加入到营养溶液中,以终浓度为8%(w / v);用于氟酮(流感,ABA抑制剂,25μm),咪唑(IMI,H.2O.2清道夫,10毫米)[30.或布洛芬(IBU,JA抑制剂,1 mm)[31]处理后,在营养液中添加抑制剂或清除剂至预定浓度;ABA (100 μM)2O.2(10 mm)或Meja(100μm)处理,用每个配置的ABA,H喷洒幼苗2O.2或meja;对于抑制剂或清除剂与干旱处理相结合,用流感,IMI或IBU进行幼苗12小时,然后转移到含有8%PEG-6000的营养溶液中。未经处理的幼苗被视为对照。在2018年8月的第一次批量和2019年12月,在0小时,1小时,2小时,3小时,5小时,7小时,12小时,5,3d,5 d进行分析后,将样品收集。批次(凭证号码CM-20,180,806-001〜010和CM-20,191,212-001〜010)。
用6周龄烟草幼苗进行农业渗透。接种后的烟苗先在室温下暗培养24 h,再在室温下光照培养24 h。初步培养48 h后,用ABA (100 μM)、h2O.2(10 mm)和Meja(100μm)。在2018年10月在2018年10月的第一次批量和1月2020年,在24°C培养后24小时培养24°C培养后24小时培养和GUS活性分析样品的叶片和GUS活性分析。CM-20,181,013-001和CM-20,200,128-001)。
各指标测定包含3个生物重复,每个生物重复包含3个分析重复。采集经处理的冬瓜幼苗的第2和第3节间(从基部到生长点数),与新鲜或冷冻样品一起进行测定。以冷冻样品的形式采集烟草叶片进行GUS酶活性测定。冷冻样品采集后立即用液氮冷冻,保存在−80℃。
ABA、JA和H的测定2O.2内容
根据Li et al.(2011)使用0.5 g冷冻样品测定ABA和JA含量[55ELISA检测试剂盒(中国农业大学生产)。采用特异性单克隆抗体进行ABA和JA分析,并根据厂商说明书建立各激素的标准曲线。ABA和JA含量以ng表示−1鲜重。
H的内容2O.2使用0.1g冻结的样品确定H后的H.2O.2内容检测试剂盒(Cat#A064,南京建城生物工程研究所,中国南京)H2O.2含量以mmol g表示−1通过405nm处的吸光度计算的鲜重(fw)计算。
木质素含量测定
木质素含量的测定依据Zhang et al. (2010) [56]以及我们之前描述的[27那53].在280nm下测量提取的木质素溶液。根据标准曲线计算木质素含量,并表示为mg g−1DW。
组织化学木质素染色
甘油酸-HCl-HCl染色与我们之前的研究中所述相同[27].切片厚度为10 μm。
CAD活动的测定
CAD活动的执行与我们前面描述的相同[27].用作乙酸醇作为底物,CAD活性作为U mg呈现−1蛋白质。基于Bradford(1976)描述的方法,通过使用Biorad蛋白质测定试剂盒(Takara,Japan,Takara,Japan)来测量蛋白质浓度[57.].
RNA提取,cDNA合成和QRT-PCR
RNA提取、cDNA合成和qRT-PCR过程均按照我们前面的描述进行[27].基因序列cmpal1样那CmPAL2-like那CmCAD1 ~ 5那CmPOD1-like那cmpod2样那CmLAC4-like那CmLAC11-like和CMLAC17样在Melonomics (https://www.melonomics.net/),序列18岁rrna,CMC4H.那Cm4CL1和CMCOMT.在NCBI实现(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)和序列CMCCR.在广场实现(https://bioinformatics.psb.ugent.be/plaza/versions/plaza_v4_dictots/).表S中列出了基因加入号和PCR引物序列1.每个基因/18年代0小时的RRNA比为1. 2-ΔΔCT.方法用于计算基因的相对表达。
Gus报道基因载体的构建和烟草中的表达
使用Hi-DNAsecure植物试剂盒从未经处理的甜瓜叶中萃取用于启动子克隆的DNA(Cat#DP350-02,天根,北京,中国)。PrimeStar®HS(PREMIX)(代码编号R040A,TAKARA,日本)用于序列克隆。启动子序列CMCAD1.那CMCAD2.和CMCAD3.首先使用没有限制酶切割部位的引物克隆,然后添加多尾(猫#TT124,天根,北京,中国)并连接到T-Vector(PMDTM19(简单),代码编号3271,Takara,Japan)使用T4 DNA连接酶试剂盒(猫#TT406,天根,北京,中国)进行测序。正确的序列,与从骨骼学下载的序列相同(https://www.melonomics.net/)使用具有限制酶切割部位的引物克隆并通过使用与ACC I和后III限制酶的双消化方案连接到线性化的PCAMBIA1381Z中。Takara Minibest DNA片段净化套件Ver.4.0(代码No.9761,Takara,日本)用于必要时克隆序列纯化。构建的矢量被引入根癌土壤杆菌(菌株GV3101)分别使用冻融方案能力,并用含有25mg L的LB培养基筛选和接种病毒−1利福平和50毫克L−1卡那霉素。PCR和凝胶电泳检测后,将正确的菌斑接种于50 ml LB液体培养基中,利福平和卡那霉素存在于erlenmeyer烧瓶中,接种14-16 h。4°C 5000rpm离心10 min。的收获农杆菌属将粒料重悬于浸润缓冲液(10mM MgCl)的600nm处的1.0的密度。2,10 mm mes,0.1 mm acetosyringone)。在室温下在暗条件下温育3小时后,使用1mL无需注射器避免静脉注入浸润培养物压入完全消费的烟草植物叶子。这里使用的引物列于表s中2.
GUS染色
根据Jefferson等人描述的方法,测定烟草中的GUS染色。(1987)[58.].将接种烟叶的盘在GUS染色溶液中孵育[50mM磷酸盐缓冲液(pH7.0),0.5mm k3.Fe(CN)6., 0.5 mM K4.Fe(CN)6.,在37℃下,在37℃下,0.1%(v / v),Triton X-100,10mM EDTA和0.5mg / mL X-Gluc(5-溴-4-氯-3-吲哚基-3-吲哚基-3- Ingolyl-β-D-incolyl-β-D-incolyl-β-D-incolyl-β-D-incolyl-β-D-incolyl-β-D-incolyl-β-d-incolyl-β-d-indolyl-β-d-incolar-incolyl-β-d-incolyl-β-d-incoluld)。.然后将染色样品除去叶绿素,用80%(v / v)乙醇,并使用EPSON扫描仪(EPSON表达12000xL)扫描。
格斯活动
GUS活性参照Jefferson et al. (1987) [58.Wang et al. (2019) [59.].接种烟草叶(每种生物复制样品0.2g)用于GUS活性检测,其计算为μmol底物的μmol底物,如每分钟所述,并表达为U mg−1蛋白质。使用Biorad蛋白质测定试剂盒来确定基于Bradford(1976)描述的Coomassie亮蓝G-250的酶提取物的蛋白质浓度[57.].
统计分析
用Excel 2013进行数据整理,用SPSS 18.0进行分析P.= 0.05检验显著性。然后使用Origin 8.0和Photoshop CS4进行图形生成和美化。
可用性数据和材料
数据集包含在文章和其附加文件中。本文分析的基因的登录号可以在表S中实现1.
缩写
- 计算机辅助设计:
-
肉桂醇脱氢酶
- 阿坝:
-
脱盐酸
- H2O.2:
-
过氧化氢
- JA:
-
茉莉酸
- Meja:
-
茉莉酸甲酯
- SA:
-
水杨酸
- ROS:
-
活性氧
- 流感:
-
氟酮
- IMI:
-
咪咪罗
- IBU:
-
布洛芬
- 挂钩:
-
聚乙二醇
- GUS:
-
β葡萄糖醛酸酶
- 存在:
-
定量实时聚合酶链反应
- C4H:
-
肉桂醛4-羟化酶
- 4CL:
-
4-coumarate-CoA连接酶
- CCR:
-
肉桂 - CoA还原酶
- COMT:
-
咖啡酸O.- 甲基转移酶
- 朋友:
-
苯丙氨酸氨裂解酶
- 圆荚体:
-
过氧化物酶
- LAC:
-
漆酶
- F5H:
-
发射5-羟基化酶
参考
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确认
我们感谢Tao Xu和Feng Wang教授为撰写本文提供有价值的帮助。
资金
中国农业科学研究系统(CARS-25)资助。资助机构在实验的设计、数据的收集、分析和解释以及手稿的准备中没有作用。
作者信息
从属关系
贡献
WL,YJ和HYQ构思和设计了实验。YZJ鉴定了木质素生物合成基因。WL和YJ进行了实验。WL,CHW和JY分析了数据。WL和YJ写了稿件和HYQ改进了它。所有作者都读过并批准了稿件。
通讯作者
道德声明
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不适用。
同意出版
不适用。
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刘,W.,江,Y.,金,Y。等等。干旱诱发ABA,H2O.2和贾巴积极调节cmcad.甜瓜茎中的基因和木质素合成。BMC植物杂志21,83(2021)。https://doi.org/10.1186/s12870-021-02869-0.
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